Влияние кавитированного низкочастотным ультразвуком раствора хлоргексидина на количественный и видовой состав лактофлоры влагалища

УДК 618.15

DOI: 10.22138/2500-0918-2016-14-4-52-60

Е.С. Ворошилина, Е.Э. Плотко, Л.В. Хаютин, Д.Л. Зорников

Уральский государственный медицинский университет, г. Екатеринбург, Российская Федерация;
Медицинский центр «Гармония», г. Екатеринбург, Российская Федерация

Резюме.
С целью оценки влияния кавитированного низкочастотным ультразвуком 0,05% раствора хлоргексидина на количественный и видовой состав лактофлоры влагалища в исследование были включены 154 женщины репродуктивного возраста. Всем женщинам проводили обработку влагалища кавитированным низочастотным ультразвуком водным 0,05% раствором хлоргексидина (КНУЗ РХ) с помощью аппарата АУЗХ-100: время воздействия — 1–2 минуты, мощность — 6–8 единиц, объем используемого раствора — 150–200 мл.Состояние микробиоценоза влагалища и долю каждого вида лактобацилл определяли методом ПЦР с детекцией результатов в реальном времени (ПЦР-РВ). Исследование проводили дважды: до (на этапе первичного консультирования) и после обработки влагалища и экзоцервикса КНУЗ РХ.В зависимости от доминирующего вида лактобацилл всех пациенток разделили на пять групп: с преобладанием вида L. crispatus, L. iners, L. jensenii, L. gasseri, L. vaginalis. При доминировании видов L. crispatus и L. iners сохранение или увеличение суммарной доли лактобацилл в микробиоценозе после обработки влагалища КНУЗ РХ отмечали в 84% и 98% случаев, соответственно, при доминировании L. gasseri — лишь в 59% случаев. Количество и перечень одновременно выявляемых видов после обработки не изменялись ни у одной из пациенток. У большинства наблюдаемых женщин (77,5%) доминирующий вид лактобацилл остался неизменным, изменение доминирующего вида отмечали, соответственно, в 22,5%. Смена господствующего вида во всех случаях происходила на присутствовавший ранее в микробиоценозе вид, но в меньшей доле, а ранее доминировавший вид при этом сохранялся, но уже в качестве сопутствующего. Смену доминирующего вида чаще фиксировали на фоне изначального преобладания L. gasseri (у 3 из 6 пациенток). Установлено, что влияние КНУЗ РХ на структуру лактофлоры ограничено и обусловлено изначальным видовым составом вагинальных лактобацилл.

Ключевые слова:
микробиоценоз влагалища, лактобациллы, кавитированный раствор хлоргексидина, ПЦР в реальном времени, L. crispatus, L. iners, L. Gasseri

ЛИТЕРАТУРА
1. Lauer E, Helming C, Kandler O. Heterogeneity of the species Lactobacillus acidophilus (Moro) Hansen and Mocquot as revealed by biochemical characteristics and DNA-DNA hybridization. Zentbl Bakteriol Microbiol Hyg Abt 1980;1:150–68.
2. Johnson JL, Phelps CF, Cummins CS, London J, Gasser F. Taxonomy of the Lactobacillus acidophilus Group. Int J Syst Bacteriol 1980;30:53–68.
3. Falsen E, Pascual C, Sjoden B, Ohlen M, Collins MD. Phenotypic and phylogenetic characterization of a novel Lactobacillus species from human sources: description of Lactobacillus iners sp. nov. Int J Syst Bacteriol 1999;49:217–21.
4. Schleifer KH, Ludwig W. Phylogeny of the genus Lactobacillus and related genera. Syst Appl Microbiol 1995;18:461–7.
5. Wilks M, Wiggins R, Whiley A, Hennessy E, Warwick S, Porter H, et al. Identification and H(2)O(2) production of vaginal lactobacilli from pregnant women at high risk of preterm birth and relation with outcome. J Clin Microbiol. 2004 Feb;42(2):713-7.
6. Balashov SV, Mordechai E, Adelson ME, Sobel JD, Gygax SE. Multiplex quantitative polymerase chain reaction assay for the identification and quantitation of major vaginal lactobacilli. Diagn Microbiol Infect Dis. 2014 Apr;78(4):321-7.
7. Fredricks DN. Molecular methods to describe the spectrum and dynamics of the vaginal microbiota. Anaerobe. 2011 Aug;17(4):191-5.
8. Shi Y, Chen L, Tong J, Xu C. Preliminary characterization of vaginal microbiota in healthy Chinese women using cultivation-independent methods. J Obstet Gynaecol Res. 2009 Jun;35(3):525-32.
9. Rodriguez JM, Collins MD, Sjoden B, Falsen E. Characterization of a novel Atopobium isolate from the human vagina: description of Atopobium vaginae sp. nov. Int J Syst Bacteriol 1999;49:1573–6.
10. Zhou X, Bent SJ, Schneider MG et al. Characterization of vaginal microbial communities in adult healthy women using cultivation-independent methods. Microbiology 2004; 150: 2565-2573.
11. Zhou X, Brown CJ, Abdo Z, Davis CC, Hansmann MA, Joyce P, et al. Differences in the composition of vaginal microbial communities found in healthy Caucasian and black women. ISME J 2007;1:121–33.
12. Ворошилина Е.С., Донников А.Е., Плотко Е.Э., Тумбинская Л.В., Хаютин Л.В. Биоценоз влагалища с точки зрения количественной полимеразной цепной реакции: что есть норма? Акушерство и гинекология. 2011; 1: 57-65.
13. Turovskiy Y, Noll KS, Chikindas ML. The etiology of bacterial vaginosis. J Appl Microbiol. 2011 May;110(5):1105-28.
14. Bradshaw CS, Morton AN, Hocking J, Garland SM, Morris MB, Moss LM, et al. High recurrence rates of bacterial vaginosis over the course of 12 months after oral metronidazole therapy and factors associated with recurrence. J Infect Dis 2006;193:1478–86.
15. Sanchez S, Garcia PJ, Thomas KK, Catlin M, Holmes KK. Intravaginal metronidazole gel versus metronidazole plus nystatin ovules for bacterial vaginosis: a randomized controlled trial. Am J Obstet Gynecol 2004;191:1898–906.
16. Sobel JD, Ferris D, Schwebke J, Nyirjesy P, Wiesenfeld HC, Peipert J, et al. Suppressive antibacterial therapy with 0.75% metronidazole vaginal gel to prevent recurrent bacterial vaginosis. Am J Obstet Gynecol 2006;194:1283–9.
17. Swidsinski A, Mendling W, Loening-Baucke V, Ladhoff A, Swidsinski S, Hale LP, Lochs H. Adherent biofilms in bacterial vaginosis. Obstet Gynecol. 2005 Nov;106(5 Pt 1):1013-23.
18. Swidsinski A, Mendling W, Loening-Baucke V, Swidsinski S, Dorffel Y, Scholze J, Lochs H, Verstraelen H. An adherent Gardnerella vaginalis biofilm persists on the vaginal epithelium after standard therapy with oral metronidazole. Am J Obstet Gynecol 2008;198:97.e1–6.
19. Brooun A, Liu S, Lewis K. A dose-response study of antibiotic resistance in Pseudomonas aeruginosa biofilms. Antimicrob Agents Chemother. 2000 Mar;44(3):640-6.
20. Ворошилина Е.С., Тумбинская Л.В., Донников А.Е. Современные возможности диагностики бактериального вагиноза: исследование количественного и качественного состава сложных микробных сообществ. Уральский медицинский журнал. 2011; 13(91): 70-5.
21. Bartley J, Young D. Ultrasound as a treatment for chronic rhinosinusitis. Med. Hypotheses. 2009; 73(1): 15-17.
22. Обоскалова Т.А., Глухов Е.Ю., Лаврентьева И.В., Нефф Е.И., Судаков Ю.Е. Плотко Е.Э. Растворы, кавитированные низкочастотным ультразвуком, – альтернатива антибиотикам? StatusPraesens. 2012; 3 (9): 65-9.
23. Широкова Д.В., Калинина Е.А., Плотко Е.Э. Эффективность низкочастотной ультразвуковой кавитации при коррекции нарушений влагалищной флоры. В кн.: Сухих Г.Т., ред. Материалы XIV Всероссийского научного форума «Мать и дитя». М.; 2013; 369-370.
24. Плотко Е.Э., Зорников Д.Л., Хаютин Л.В., Ворошилина Е.С. Дисбиоз влагалища: видовой состав лактофлоры и возможности немедикаментозной коррекции. Акушерство и гинекология. 2015; 10: 112-117
25. Зорников Д.Л., Тумбинская Л.В., Ворошилина Е.С. Взаимосвязь отдельных видов лактобацилл с суммарной долей лактофлоры в вагинальном микробиоценозе и группами условно-патогенных микроорганизмов, ассоциированными с дисбиозом влагалища. Вестник уральской медицинской академической науки. 2015; 4 (55): 99-105
26. Ravel J, Brotman RM, Gajer P, Ma B, Nandy M, Fadrosh DW, Sakamoto J, Koenig SS, Fu L, Zhou X, Hickey RJ, Schwebke JR, Forney LJ. Daily temporal dynamics of vaginal microbiota before, during and after episodes of bacterial vaginosis. Microbiome. 2013 Dec 2;1(1):29.
27. Ravel J, Gajer P, Abdo Z, Schneider GM, Koenig SS, McCulle SL, Karlebach S, Gorle R, Russell J, Tacket CO, Brotman RM, Davis CC, Ault K, Peralta L, Forney LJ. Vaginal microbiome of reproductive-age women. Proc Natl Acad Sci USA. 2011 Mar 15;108 Suppl 1:4680-7.
28. Ворошилина Е.С., Зорников Д.Л., Плотко Е.Э. Коррекция дисбиоза влагалища кавитированным раствором хлоргексидина в первом триместре беременности: эффективность и безопасность. Журнал акушерства и женских болезней. 2014; 63 (5): 29-37.
29. Обоскалова Т.А., Глухов Е.Ю., Лаврентьева И.В. и др. Профилактика и лечение воспалительных заболеваний в акушерстве и гинекологии с использованием метода ультразвуковой кавитации лекарственных растворов. Екатеринбург: Vip-Ural; 2014.
30. Konopka A. What is microbial community ecology? ISME J. 2009 Nov;3(11):1223-30

Авторы
Ворошилина Екатерина Сергеевна
Уральский государственный медицинский университет
д.м.н., доцент кафедры микробиологии, вирусологии и иммунологии
Российская Федерация, 620109, Екатеринбург, ул. Ключевская, 17
voroshilina@gmail.com

Плотко Евгений Эдуардович
Медико-фармацевтический центр «Гармония»
д.м.н., доцент, главный врач
Российская Федерация, 620026, Екатеринбург, ул. Тверитина 16
plotko@garmonia-mc.ru

Хаютин Леонид Валерьевич
Медико-фармацевтический центр «Гармония»
Врач акушер-гинеколог
Российская Федерация, 620026, Екатеринбург, ул. Тверитина 16
office@garmonia-mc.ru

Зорников Данила Леонидович
Уральский государственный медицинский университет
Аспирант кафедры микробиологии, вирусологии и иммунологии
Российская Федерация, 620109, Екатеринбург, ул. Ключевская, 17
phenix520@yandex.ru

Дата поступления 05.09.2016

Образец цитирования:
Ворошилина Е.С., Плотко Е.Э., Хаютин Л.В., Зорников Д.Л. Влияние кавитированного низкочастотным ультразвуком раствора хлоргексидина на количественный и видовой состав лактофлоры влагалища. Вестник уральской медицинской академической науки. 2016, №4, с. 52–60, DOI: 10.22138/2500-0918-2016-14-4-52-60

Это произведение доступно по лицензии Creative Commons «Attribution-NonCommercial» («Атрибуция — Некоммерческое использование») 4.0 Всемирная.