ВЛИЯНИЕ ФОНОВОЙ НЕЙТРОПЕНИИ НА ИММУННЫЕ РЕАКЦИИ У ПРАКТИЧЕСКИ ЗДОРОВЫХ ЛЮДЕЙ ПРИ КРАТКОВРЕМЕННОМ ОБЩЕМ ОХЛАЖДЕНИИ
УДК 612.017:613.166.9:612.084
DOI: 10.22138/2500-0918-2018-15-2-239-247
С.Н. Балашова, К.О. Пашинская
Институт физиологии природных адаптаций Федерального государственного бюджетного учреждения науки Федерального исследовательского центра комплексного изучения Арктики им. академика Н.П. Лавёрова Российской академии наук, г. Архангельск, Российская Федерация
Резюме. Цель исследования — определить влияние нейтропении на иммунные реакции практически здоровых взрослых людей при кратковременном общем охлаждении. Материалы и методы. Проведено изучение показателей периферической венозной крови у 75 добровольцев до и после кратковременного общего охлаждения (5 минут в холодовой камере при –25°С). Методом иммуноферментного анализа на автоматическом анализаторе «Evolis» (Bio-RAD, Франция) определяли концентрации адреналина и норадреналина тест-наборами производства IBL Hamburg (Германия), ирисина – BioVendor (Чехия), эндотелина-1 – Biomedica (Чехия), содержание цитокинов IL-17F и TNF-? – Bender MedSystems (Австрия). Результаты и обсуждение. Содержание нейтрофильных гранулоцитов ниже 2?109 кл/л ассоциировано со снижением фагоцитарной активности нейтрофилов и повышением содержания в крови IL-17F и TNF-?. После пребывания в климатической камере в группе лиц с нейтропенией происходило дальнейшее снижение содержания нейтрофилов в крови. Реагируют на холодовой фактор клетки функционально наиболее активные и молодые, в то время как содержание старых нейтрофилов практически не меняется. После кратковременного охлаждения вне зависимости от наличия или отсутствия нейтропении регистрируется снижение уровня содержания зрелых, активированных, дифференцированных Т-клеток и натуральных киллеров, а также лимфоцитов, меченных к апоптозу. Заметная разница выявлена относительно уровня снижения активированных Т-клеток с рецептором к трансферрину (CD71+) при нейтропении. Заключение. Реакция на холодовое воздействие при наличии нейтропении отличается торможением реакций катехоламинов и эндотелина-1, которые участвуют в обеспечении адекватного термогенеза. В условиях нейтропении происходит ингибиция уровня реакции на холод активированных Т-лимфоцитов. Не установлено влияния нейтропении на реактивные изменения содержания ирисина в крови при используемых в работе условиях кратковременного общего охлаждения в климатической камере.
Ключевые слова: нейтропения, адреналин, норадреналин, цитокины, эндотелин, ирисин, общее охлаждение
Дата поступления 09.04.2018
Образец цитирования:
Балашова С.Н., Пашинская К.О. Влияние фоновой нейтропении на иммунные реакции у практически здоровых людей при кратковременном общем охлаждении. Вестник уральской медицинской академической науки. 2018, Том 15, №2, с. 239–247, DOI: 10.22138/2500-0918-2018-15-2-239-247
ЛИТЕРАТУРА
1. Добродеева Л.К., Жилина Л.П. Иммунологическая реактивность, состояние здоровья населения Архангельской области. Екатеринбург: УрО РАН, 2004.
2. Хаснулин В.И. Введение в полярную медицину. Новосибирск: СО РАМН, 1998.
3. Soter N.A., Lewis R.A., Corey E.J., Austen K.F. Local effects of synthetic leukotriens (LTC4, LTD4, LTE4, and LTB4) in human skin. J. Invest. Dermatol. 1983; 80 (2):115-19.
4. Добродеева Л.К. Иммунологическое районирование. Сыктывкар: Коми НЦ УрО РАН, 2001.
5. Алмазов В.А., Афанасьев Б.В., Зарицкий А.Ю., Шишков А.Л. Лейкопении. Л.: Медицина, 1981.
6. Shondorf R., Wieling W. Vasoconstrictor reserve in neurally mediated syncope. Clin. Auton. Res. 2000; 10: 53-57.
7. Даутова А.З., Усманова С.Р., Шамратова В.Г. Особенности регуляции кислородтранспортной системы организма при различных генотипах гена ангиоконвертирующего фермента. В кн.: Материалы XXII съезда физиологического общества им. И.П.Павлова. Москва-Волгоград; 2013: 143-4.
8. Marchioli R., Schweiger C., Levantesi G., Tavazzi L., Valagussa F. Antioxidant vitanins and prevention of cardiovascular disease: epidemiological and clinical trial data. Lipid. 2001; 36: 53-63.
9. Madigan M., Zuckerbraun B. Therapetic potential of the nitrite-generated NO pathway in vascular dysfunction. Front. Immunol. 2013; 2 (4): 174-83. DOI: 10.3389/fimmu.2013.00174.
10. Azcutia V., Stefanidakis M., Tsuboi N., Mayadas T., Croce K.J., Fukida D. et al. Endothelial CD47 promotes vascular endothelial-cadherin tyrosine phosphorylation and participates in T cell recruitment at sites of inflammation in vivo. J. Immunol. 2012; 189 (5): 2553-62. DOI: 10.4049/jimmunol.1103606.
11. Нестерова И.В., Ковалева С.В., Чудилова Г.А., Ломтатидзе Л.В., Евглевский А.А. Двойственная роль нейтрофильных гранулоцитов в реализации противоопухолевой защиты. Иммунология. 2012; 5: 281-7.
12. Meuret G. Hoffman G. Monocyte kinetic studies in normal and disease states // Brit. J. Hаematol. 1973; 24: 275-9.
13. Megiovanni A.M. Sanchez F., Robledo-Sarmiento M., Morel C., Gluckman J.C., Boudaly S. Polymorphonuclear neutrophils deliver activation signals and antigenic molecules to dendritic cells: a new link between leukocytes upstream of T lymphocytes. J. Leukoc. Biol. 2006; 79: 977-88.
14. Butcher S.K., Chahal H., Nayak L., Sinclair A.; Henriquez N. V., Sapey E. et al. Senescence in innate immune responses: reduced neutrophil phagocytic capacity and CD16 expression in elderly humans. J. Leukoc. Biol. 2001; 70: 881-6.
15. Долгушин И.И., Бухарин О.В. Нейтрофилы и гомеостаз. Екатеринбург: УрО РАН, 2001.
16. Козинец Г.И. Физиологические системы организма человека, основные показатели. М.: Триада-Х, 2000.
17. Hоlden N.J., Williams J.M., Morgan M.D, Challa A., Gordon J.; Pepper R.J. et al. ANCA-stimulated neutrophils release BLyS and promote B cell survival: a clinically relevant cellular process. Ann. Rheum. Diseases. 2011; 70: 2229-33.
18. Chen Y., Wu H., Winnall W., Loveland K.L., Makanji Y., Phillips D.J. et al. Tumor necrosis factor-alpha stimulates human neutrophyls to release preformed activin A. Immunol. and Cell Biol. 2011; 89: 889-96. DOI:10.1038/icb.2011.12
19. Los M., Schenk H., Hexel K., Baeuerle P.A., Droge W., Schulze-Osthoff K. IL-2 gene expression and NF-kB activation through CD28 requires reactive oxygen production by 5-lipoxygenase. EMBO J. 1995; 14: 3731-40.
20. Козинец Г.И., Терентьева Г.И., Файнштейн Ф.Э., Шишконово Э.Г., Лульцина С.М., Ярустовская Л.Э. и др. Морфологическая и функциональная характеристика клеток костного мозга и крови. В кн.: Нормальное кроветворение и его регуляция. М.: Медицина; 1976: 98-155.
21. Стабровский Е.М. Роль серотонинергических структур гипоталамуса в регуляции функции эндокринных органов при холодовом стрессе. Криобиология. 1987; 3: 41-4.
22. Ананьева О.В., Ананьев В.Н. Фармакокинетика и фармакодинамика адреналина и норадреналина при их действии на периферические артерии при различных периодах адаптации к холоду. Современные проблемы науки и образования. 2017; 3. Available at: https://science-education.ru/ru/article/view?id=26496
23. Kozyreva T.V., Tkachenko E.Ya., Eliseeva L.S., Kozaruk V.P., Polyakova E.V. A possible mechanism for noradrenaline involvement in the effector responses to cold exposure. J. Thermal Biology. 2001; 26 (4-5):505-12.
24. Guimaraes S., Moura D. Vascular adrenoceptors: аn update. Pharmacol. Rev. 2001; 53 (2): 319-56.
25. Roussel L., Houle F., Chan C. Yao Y., Berube J., Olivenstein R. et al. IL-17 promotes p38 MAPK-dependent endothelial activation enhancing neutrophil recruitment to sites of inflammation. J. Immunol. 2010; 184: 4531-37. DOI: 10.4049/jimmunol.0903162
26. Laan M., Prause O., Miyamoto M., Sjostrand M., Hytonen A.M., Kaneko T et al. A role of GM-CSF in the accumulation of neutrophils in the airways caused by IL-17 and TNF-alpha. Eur. Respir. J. 2003; 21: 387-93.
27. Cascao R., Rosario H.S., Fonseca J.E. Neutrophils: warriors and commanders in immune mediated inflammatory diseases. Acta reumatol. port. 2009; 34: 313-26.
28. Нехаев С.Г., Григорьев С.Г. Полиморфноядерные лейкоциты как система антиэндотоксикационной защиты организма. Иммунология. 2010; 31 (3): 116-18.
29. Bostrom P., Wu J., Jedrychowski M.P., Korde A., Ye L., Lo J.C. et al. A PGC1-?-dependent myokine that drives brown-fat-like development of white fat and thermogenesis. Nature. 2012; 481:463-8. DOI: 10.1038/nature10777.
30. Ferrante C., Orlando G., Recinella L., Leone S., Chiavaroli A., Di Nisio C. et al. Central inhibitory effects on feeding induced by the adipo-myokine irisin. European journal of pharmacology. 2016; 791: 389-94. DOI: 10.1016/j.ejphar.2016.09.011.
Авторы
Балашова Светлана Николаевна
к.б.н., старший научный сотрудник лаборатории регуляторных механизмов иммунитета
ifpa-svetlana@mail.ru
Пашинская Ксения Олеговна
Аспирант лаборатории регуляторных механизмов иммунитета
nefksu@mail.ru
Институт физиологии природных адаптаций Федерального исследовательского центра комплексного изучения Арктики им. акад. Н.П. Лавёрова РАН
Российская Федерация, 163001, г. Архангельск, пр. Ломоносова, 249
