МАРКЕРЫ ХРОНИЧЕСКОГО СИСТЕМНОГО ВОСПАЛЕНИЯ ПРИ ТУБЕРКУЛЕЗНОМ СПОНДИЛИТЕ
УДК: 616-002.5:616-092.6
DOI: 10.22138/2500-0918-2024-21-2-101-113
Ю.А. Журавлёва¹, Е.В. Сабадаш²,³, Т.В. Миногина²,³, Е.Ю. Гусев¹, С.Н. Скорняков²,³, Л.В. Соломатина¹, А.Д. Литовская³
¹ Федеральное государственное бюджетное учреждение науки Институт иммунологии и физиологии УрО РАН, Екатеринбург, Российская Федерация;
² Уральский научно-исследовательский институт фтизиопульмонологии — филиал ФГБУ «НМИЦ ФПИ» Минздрава России, Екатеринбург, Российская Федерация;
³ ФГБОУ Уральский государственный медицинский университет Минздрава России, Екатеринбург, Российская Федерация
Резюме. На сегодняшний день туберкулез представляет собой актуальную социально-экономическую и медико-биологическую проблему. Первое место в структуре внелегочного туберкулеза занимает костно-суставной туберкулез, среди форм которого преобладает туберкулезный спондилит. Рассмотрение патогенеза туберкулезного спондилита с позиции хронического системного воспаления позволит расширить теоретические и методологические подходы к оценке состояния пациентов. Цель исследования: проанализировать особенности продукции маркеров хронического системного воспаления при туберкулезном спондилите и оценить вероятность развития хронического системного воспаления у данных пациентов. Материалы и методы. У пациентов с туберкулезным спондилитом исследовались молекулярные маркеры следующих феноменов: системная воспалительная реакция, системная альтерация, дистресс-реакция гипоталамо-гипофизарно-надпочечниковой системы, системное микротромбообразование, эндотелиальная дисфункция. По оригинальной методике оценивалась вероятность развития хронического системного воспаления (ХрСВ) и низкоинтенсивного системного воспаления (НИСВ). Результаты исследования показали, что несмотря на статистически значимое повышение уровней большинства исследуемых маркеров относительно здоровых лиц, они в большинстве случаев не достигали критериальных для развития отдельных феноменов значений. Частота выявления ХрСВ в целом составила 8,3%, НИСВ — 25%. Таким образом, у пациентов с туберкулезным спондилитом выявлено наличие латентно протекающих провоспалительных процессов (системная воспалительная реакция, эндотелиальная дисфункция, паракоагуляция, дистресс нейроэндокринной системы, системная альтерация). Частота выявления ХрСВ менее чем в 10% случаев позволяет отнести туберкулезный спондилит к заболеваниям с низкой вероятностью развития ХрСВ.
Ключевые слова: туберкулезный спондилит, хроническое системное воспаление, низкоинтенсивное системное воспаление
Конфликт интересов отсутствует. Контактная информация автора, ответственного за переписку: Журавлёва Юлия Александровна jazhur@mail.ru Дата поступления: 19.03.2024
Образец цитирования: Журавлёва Ю.А., Сабадаш Е.В., Миногина Т.В., Гусев Е.Ю., Скорняков С.Н., Соломатина Л.В., Литовская А.Д. Маркеры хронического системного воспаления при туберкулезном спондилите. [Электронный ресурс] Вестник уральской медицинской академической науки. 2024, Том 21, № 2, с. 101–113, DOI: 10.22138/2500-0918-2024-21-2-101-113
ЛИТЕРАТУРА
1. Global tuberculosis report 2023: Geneva: World Health Organization; 2023. Licence: CC BY-NC-SA 3.0 IGO
2. Usmonov I.Kh., Muazzamov B.R., Jumaev M.F. Features of diagnostics and treatment of drug-resistant forms of pulmonary tuberculosis. Int. J. Pharm. Res. 2021; 13 (1): 2484-2489. doi: 10.31838/ijpr/2021.13.01.406
3. Кульчавеня Е. В., Мерганов М. М., Шарипов Ф. Р. Эпидемиология внелегочного туберкулеза в регионах с высокой заболеваемостью. Туберкулёз и болезни лёгких. 2020; 98(7): 37-43. doi: 10.21292/2075-1230-2020-98-7-37-43
4. Gusev E., Zhuravleva Y. Inflammation: A New Look at an Old Problem. Int. J. Mol. Sci. 2022; 23: 4596. doi: 10.3390/ijms23094596
5. Amaral E.P., Vinhaes C.L., Oliveira-de-Souza D., Nogueira B., Akrami K.M., Andrade B.B. The Interplay between Systemic Inflammation, Oxidative Stress, and Tissue Remodeling in Tuberculosis. Antioxid. Redox Signal. 2021; 34(6): 471-485. doi: 10.1089/ars.2020.8124
6. Demitto F.O., Araújo-Pereira M., Schmaltz C.A., Sant’Anna F.M., Arriaga M.B., Andrade B.B. et al. Impact of Persistent Anemia on Systemic Inflammation and Tuberculosis Outcomes in Persons Living With HIV. Front. Immunol. 2020; 11: 588405. doi: 10.3389/fimmu.2020.588405
7. Zotova N., Zhuravleva Yu., Chereshnev V., Gusev E. Acute and Chronic Systemic Inflammation: Features and Differences in the Pathogenesis, and Integral Criteria for Verification and Differentiation. Int. J. Mol. Sci. 2023; 24(2): 1144 doi: https://doi.org/10.3390/ijms24021144
8. Гусев Е.Ю., Юрченко Л.Н., Черешнев В.А., Зотова Н.В. Методология изучения системного воспаления. Цитокины и воспаление. 2008; 7(1): 15-23.
9. Котеров А.Н., Ушенкова Л.Н., Зубенкова Э.С., Калинина М.В., Бирюков А.П., Ласточкина Е.М. др. Сила связи. Сообщение 2. Градации величины корреляции. Медицинская радиология и радиационная безопасность. 2019; 64(6): 12–24. doi: 10.12737/1024-6177-2019-64-6-12-24
10. Tokuda M., Nagaoka S., Torii M. Interleukin-10 inhibits expression of interleukin-6 and -8 mRNA in human dental pulp cell cultures via nuclear factor-kappaB deactivation. J. Endod. 2002; 28(3): 177-180. doi: 10.1097/00004770-200203000-00008.
11. Zhao S., Wu D., Wu P., Wang Z., Huang J. Serum IL-10 Predicts Worse Outcome in Cancer Patients: A Meta-Analysis. PLoS One. 2015; 10(10): e0139598. doi: 10.1371/journal.pone.0139598.
12. Wang L., Shang X., Qi X., Ba D., Lv J., Zhou X. Clinical Significance of M1/M2 Macrophages and Related Cytokines in Patients with Spinal Tuberculosis. Dis. Markers. 2020; 2020: 2509454. doi: 10.1155/2020/2509454
13. Marsden P.A., Brenner B.M. Transcriptional regulation of the endothelin-1 gene by TNF-alpha. Am. J. Physiol. 1992; 262(4 Pt 1): 854-861. doi: 10.1152/ajpcell.1992.262.4.C854
14. Liang L., Yu J., Zhou W., Liu N., E L.L., Wang D.S. et al. Endothelin-1 stimulates proinflammatory cytokine expression in human periodontal ligament cells via mitogen-activated protein kinase pathway. Periodontol. 2014; 85(4): 618-826. doi: 10.1902/jop.2013.130195
15. Чаулин А.М, Карслян Л.С., Дупляков Д.В. Некоронарогенные причины повышения тропонинов в клинической практике. Клиническая практика. 2019; 10 (4): 81-93. doi: 10.17816/clinpract16309
16. Kager L.M., Blok D.C., Lede I.O., Rahman W., Afroz R., Bresser P. et al. Pulmonary tuberculosis induces a systemic hypercoagulable state. J Infect. 2015; 70(4): 324-334. doi: 10.1016/j.jinf.2014.10.006
17. Nan G.Y., Fei H., Zhen W., Yun D.T. Risk factors associated with venous thromboembolism in tuberculosis: A case control study. Clin. Respir. J. 2022; 16(12): 835-841. doi: 10.1111/crj.13555
18. Насонов Е.Л., Бекетова Т.В., Решетняк Т.М., Лила А.М., Ананьева Л.П., Лисицина Т.А. и др. Коронавирусная болезнь 2019 (COVID-19) и иммуновоспалительные ревматические заболевания: на перекрестке проблем тромбовоспаления и аутоиммунитета. Научно-практическая ревматология. 2020; 58 (4): 353–367. doi: 10.47360/1995-4484-2020-353-367
19. Bonaventura A., Vecchié A., Dagna L., Martinod K., Dixon D.L., van Tassell B.W., et al. Endothelial dysfunction and immunothrombosis as key pathogenic mechanisms in COVID-19. Nat. Rev. Immunol. 2021; 21(5): 319-329.doi: 10.1038/s41577-021-00536-9
20. Kothari H., Rao L.V., Vankayalapati R., Pendurthi U.R. Mycobacterium tuberculosis infection and tissue factor expression in macrophages. PLoS One. 2012; 7(9): e45700. doi: 10.1371/journal.pone.0045700
21. van der Wel N., Hava D., Houben D., Fluitsma D., van Zon M., Pierson J. et al. M. tuberculosis and M. leprae translocate from the phagolysosome to the cytosol in myeloid cells. Cell. 2007; 129(7): 1287-1298. doi: 10.1016/j.cell.2007.05.059
22. Genoula M., Marín Franco J.L., Maio M., Dolotowicz B., Ferreyra M., Milillo M.A., Mascarau R. et al. Fatty acid oxidation of alternatively activated macrophages prevents foam cell formation, but Mycobacterium tuberculosis counteracts this process via HIF-1α activation. PLoS Pathog. 2020;16(10): e1008929. doi: 10.1371/journal.ppat.1008929
23. Redente E.F., Higgins D.M., Dwyer-Nield L.D., Orme I.M., Gonzalez-Juarrero M., Malkinson A.M. Differential polarization of alveolar macrophages and bone marrow-derived monocytes following chemically and pathogen-induced chronic lung inflammation. J. Leukoc. Biol. 2010; 88(1): 159-168. doi: 10.1189/jlb.0609378
24. Mily A., Kalsum S., Loreti M.G., Rekha R.S., Muvva J.R., Lourda M. et al. Polarization of M1 and M2 Human Monocyte-Derived Cells and Analysis with Flow Cytometry upon Mycobacterium tuberculosis Infection. J. Vis. Exp. 2020; 163. doi: 10.3791/61807
Авторы
Журавлёва Юлия Александровна
К.б.н., старший научный сотрудник Лаборатории иммунологии воспаления
ФГБУН Институт иммунологии и физиологии Уральского отделения Российской академии наук (ИИФ УрО РАН)
jazhur@mail.ru
Российская Федерация, Екатеринбург
Сабадаш Елена Венидиктовна
Заведующая научно-клинической лабораторией сочетанных социально-значимых заболеваний
Уральский научно-исследовательский институт фтизиопульмонологии — филиал ФГБУ «НМИЦ ФПИ» Минздрава России
К.м.н., доцент кафедры инфекционных болезней, фтизиатрии и пульмонологии
ФГБОУ ВО Уральский государственный медицинский университет Минздрава России
sabadashelena@mail.ru
Российская Федерация, Екатеринбург
Миногина Татьяна Вячеславовна
Аспирант
Уральский научно-исследовательский институт фтизиопульмонологии — филиал ФГБУ «НМИЦ ФПИ» Минздрава России
ФГБОУ Уральский государственный медицинский университет Минздрава России
t.minogina1@gmail.com
Российская Федерация, Екатеринбург
Гусев Евгений Юрьевич
Д.м.н., профессор, ведущий научный сотрудник, заведующий Лабораторией иммунологии воспаления
ФГБУН Институт иммунологии и физиологии Уральского отделения Российской академии наук (ИИФ УрО РАН)
gusev36@mail.ru
Российская Федерация, Екатеринбург
Скорняков Сергей Николаевич
Заведующий научным отделом
Уральский научно-исследовательский институт фтизиопульмонологии — филиал ФГБУ «НМИЦ ФПИ» Минздрава России
Д.м.н, профессор кафедры инфекционных болезней, фтизиатрии и пульмонологии
ФГБОУ Уральский государственный медицинский университет Минздрава России
sns@urniif.ru
Российская Федерация, Екатеринбург
Соломатина Лилия Владимировна
К.м.н., старший научный сотрудник Лаборатории иммунологии воспаления
ФГБУН Институт иммунологии и физиологии Уральского отделения Российской академии наук (ИИФ УрО РАН)
slv10@list.ru
Российская Федерация, Екатеринбург
Литовская Анна Дмитриевна
Ординатор кафедры инфекционных болезней, фтизиатрии и пульмонологии
ФГБОУ Уральский государственный медицинский университет Минздрава России
lkv-aer@mail.ru
Российская Федерация, Екатеринбург