Лимфопролиферативная активность клеток периферической крови у коренного населения Арктики в зависимости от типа питания

УДК [612.014.4+576.3]:338.439.6(98)

Патракеева В.П., Меньшикова Е.А.

Федеральное государственное бюджетное учреждение науки Институт физиологии природных адаптаций УрО РАН,
г. Архангельск, Российская Федерация

Резюме. В работе проведено изучение влияния типа питания на активизацию пролиферативной активности клеток периферической крови. Установлено, что преимущественное употребление в пищу рыбы влияет на дифференцировку и пролиферацию лимфоцитов с активизацией через трансферриновые рецепторы и HLADR+, с формированием Т-хелперов 2 типа, т.о. стимулируя антителообразование. Это приводит к активизации реагинового механизма и как результат, к усилению барьерной функции слизистой, повышению уровня полисахаридов муцинового типа клеток эпителия, оказывающих влияние на дифференцировку клеток.

Ключевые слова: пролиферация, питание, Арктика, реагины, раково-эмбриональный антиген

ЛИТЕРАТУРА
1. Daly JM, Lieberman MD, Goldfine J, Shou J, Weintraub F, Rosato EF, Lavin P. Enteral nutrition with supplemental arginine, RNA, and omega-3 fatty acids in patients after operation: immunologic, metabolic, and clinical outcome // Surgery. – 1992. – Vol. 112(1). – P. 56–67.
2. Геннис Р. Биомембраны: молекулярная структура и функции. М; Мир: 1997.
3. Lanick J.W., Cresswell P. Modulation of cell surface iron transferrin receptors by cellular density and state of activation // J .Supramol. Struct. – 1979. – P. 11:279.
4. Chitambar C.R., MasseqE.l., Seligman P.A. Regulation of transferrin receptor expression on human leukemic cells during proliferation and induction of differentiation // J. Clin. Invest. – 1983. – P. 72:1314.
5. Pantopoulos K., Mueller S., Atzberger A., Ansorge W., Stremmel W., Hentze M.W Differences in the regulation of iron regulatory protein-1 (IRP-1) by extra- and intracellular oxidative stress // J. Biol. Chem. – 1997. – Vol.272. – P.9802-9808.
6. Pantopoulos K., Hentze M.W. Nitric oxide and oxidative stress (H2O2) control mammalian iron metabolism by different pathways // Mol. Cell Biol. – 1996. – Vol.16. – P.3781-3788.
7. De Sanctis J.B., Blanca I., Rivera H., Bianco N.E. Expression of low-density lipoprotein receptors in peripheral blood and tonsil B lymphocytes // Clin. Exp. Immunol. – 1998. – Vol.113 (2). – P. 206-12.
8. Terkeltaub R., Martin J., Curtiss L.K., Ginsberg M.H. Apolipoprotein B mediates the capacity of low density lipoprotein to suppress neutrophil stimulation by particulates // J.Biol.Chem. – 1986. – Vol. 25 (33). – P. 15662-7.
9. Paragh G., Nagy J. T., Szondy E. et al. Immunomodulating effect of low density lipoprotein on human monocytes // Clin. And Exp. Immunol. – 1986. Vol. 64(3). – P. 665-72.
10. Caspar-Bauguil S., Tkaczuk J., Haure M.J. et al. Mildly oxidized low-density lipoproteins decrease early production of interleukin 2 and nuclear factor kappaB binding to DNA in activated T-lymphocytes // Biochem. J. – 1999. – Vol. 15 (337). – P. 269-74.
11. Семенков В.Ф., Ковальчук Л.В. Биологические механизмы старения иммунной системы и современные подходы к их коррекции // Успехи современной биологии. – 2005. — том 125, №5. – с. 446-465
12. Harris N.L., Jaffe E.S., Stein H., Banks P.M., Chan J.K., Cleary M.L., Delsol G., De Wolf Peeters C., Falini B., Gatter K.C. A revised European-American classification of lymphoid neoplasms: A proposal from the International Lymphoma Study Group [see comments] // Blood. – 1994. – Vol. 84. – P. 1361.
13. Cheah C.Y., Wirth A., Seymour J.F. Primary testicular lymphoma // Blood. – 2014. – Vol. 123. – P. 486-493.
14. Delette C., Robin C., Ikoli J.-F., Saidi L., Parcelier A., Royer B., Damaj G., Merlusca L., Charbonnier A., Guiheneuf E., Sevestre H, Marolleau J.P. Expression Of Histological markers and PET-CT Maximal Standardized Uptake for Follicular Lymphoma // Blood. – 2013. – Vol. 122. – P. 5058.
15. Minami H., Ohishi K., Nakamori Y., Masuya M., Katayama N. LFA-1-Mediated Adhesion Of Human Hematopoietic Progenitors To Bone Marrow Stromal Cells Enhances B-Lineage Differentiation Toward CD19+ ProB Cells, While The Generation Of CD7+CD56-CD45RA+ Multipotent Lymphoid andCD10+CD19- B-Biased Progenitors Is Supported By Soluble Factors Produced From Stromal Cells // Blood. — 2013. Vol. — 122. – P. 3697.
16. Chen D., Ketterling R.P. A leukemic presentation of a “triple-hit” lymphoma // Blood. – 2014. – Vol. 123 (8). – P.1126.
17. Slukvin I.I. Hematopoietic specification from human pluripotent stem cells: current advances and challenges toward de novo generation of hematopoietic stem cells // Blood. – 2013. – Vol. 122. – P. 4035-4046.
18. Rossi M.I., Yokota T., Medina K.L., Garrett K.P., Comp P.C., Schipul A.N., Jr.Kincade P.W. B-lymphopoiesis is active throughout human life, but there are developmental age-related changes // Blood. – 2003. – Vol. 101. – №2. – Р. 576-584
19. Kuvibidila SR1, Velez M, Gardner R, Penugonda K, Chandra LC, Yu L. Iron deficiency reduces serum and in vitro secretion of interleukin-4 in mice independent of altered spleen cell proliferation // Nutr Res. – 2012. – Vol. 32(2). – P. 107-15. 
20. Кривоногова О.В., Репина В.П., Ставинская О.А., Добродеева Л.К. Уровни содержания раково-эмбрионального антигена и лимфопролиферации у жителей промышденных городов севера России с градообразующим предприятием – целлюлозно-бумажным комбинатом // Известия Самарского научного центра Российской академии наук. – 2009. – Т.11, № 1(5). – С. 970-972.
21. Петреня Н.Н.Содержание общего сывороточного иммуноглобулина Е и физиологическая значимость реагинового механизма иммунной защиты у детей и взрослых на Севере Европейской территории России. Автореф. Дис…..канд.биол.наук. – Архангельск. 2005. с. 17.
22. Gold F., Goldenberg N.A. The Carcinoembryonic Antigen (CEA): Past, Present, and Future http://www.medicine.mcgill.ca/mjm/v03n01/cea.html

Авторская справка:

Патракеева Вероника Павловна repina-veronika@yandex.ru
Кандидат биологических наук, старший научный сотрудник лаборатории регуляторных механизмов иммунитета
Меньшикова Елена Александровна vecaup24@yandex.ru
Кандидат биологических наук, старший научный сотрудник лаборатории регуляторных механизмов иммунитета
Федеральное государственное учреждение науки Институт физиологии природных адаптаций Уральского отделения Российской академии наук
Российская Федерация 163000 г. Архангельск, пр. Ломоносова, д. 249.