Апоптоз моноцитов в условиях общего охлаждения у лиц с фоновым моноцитозом

DOI: 10.22138/2500-0918-2019-16-2-202-208

УДК 612.017:613.166.9:612.084

О.А. Ставинская

Институт физиологии природных адаптаций Федерального государственного бюджетного учреждения науки Федерального исследовательского центра комплексного изучения Арктики им. академика Н.П. Лавёрова Российской академии наук, г. Архангельск, Российская Федерация

Резюме. Цель исследования — изучить динамику программируемой гибели моноцитов после кратковременного охлаждения у лиц с фоновым моноцитозом. Материалы и методы. Проведено обследование 56 человек в возрасте от 20 до 50 лет до и после кратковременного общего охлаждения (5 минут в холодовой камере при –25°С). При этом соблюдались нормы и правила биомедицинской этики. Лейкограмму периферической крови определяли на гематологическом анализаторе Sysmex XS-500i (Япония). Программируемую гибель моноцитов периферической крови оценивали по содержанию полиморфно-ядерных клеток в составе моноцитограммы на микроскопе Vision MT5300L (Япония). Методом твердофазного иммуноферментного анализа на автоматическом анализаторе «Evolis» (Bio-RAD, Франция) выявляли сывороточные концентрации TNF-α, IL-1β, IL-6, IL-10 (Bender MedSystems, Австрия). Результаты и обсуждение. Анализ результатов исследования проводили, сравнивая уровни ответных реакций в зависимости от содержания в крови до пребывания в холодовой камере циркулирующих моноцитов (<0,6×109 кл/л, n=35 и ≥0,9×109 кл/л, n=21, p<0,001). Установлено, что при нормальном содержании моноцитов наблюдается снижение содержания зрелых Т-клеток, фагоцитарной активности, а также TNFα; на фоне моноцитоза выше концентрации зрелых, активированных и дифференцированных Т-клеток, цитокиновая реакция ограничивается повышением содержания IL-1β. Холодовой фактор увеличивает апоптоз моноцитов в случаях моноцитоза; при нормальном содержании моноцитов в крови статистически значимого увеличения активности апоптоза моноцитов не установлено. Заключение. Моноцитоз обеспечивается секретирующими моноцитами с низкой фагоцитарной активностью, ассоциирован с повышением содержания в венозной крови зрелых и активированных Т- и В-лимфоцитов, IL-6 и регулируется повышением активности апоптоза этих клеток.

Ключевые слова: моноцитоз, апоптоз моноцитов, общее охлаждение, фенотипы, цитокины, практически здоровые люди

Дата поступления 15.04.2019.

Образец цитирования:
Ставинская О.А. Апоптоз моноцитов в условиях общего охлаждения у лиц с фоновым моноцитозом.
Вестник уральской медицинской академической науки. 2019, Том 16, №2, с. 202–208, DOI: 10.22138/2500-0918-2019-16-2-202-208

ЛИТЕРАТУРА
1. Деряпа Н.Р., Рябинин И.Ф. Адаптация человека в полярных районах земли. – Л.: Медицина, 1977. – 296 с.
2. Афанасьева Р.Ф. Холодовой стресс и его профилактика / Р.Ф. Афанасьева, О.В. Бурмистрова // Мед. труда и пром. экология. – 2001. – № 8. – С.10–15.
3. Bailey S.R. Reactive oxygen species from smooth muscle mitochondria initiate cold-induced constriction of cutaneous arteries / S.R. Bailey, S. Mitra, S. Flavahan, et al. // Amer. J. Physiol. Heart. Circ. Physiol. – 2005. – Vol. 289, Is. 1. – Р. 243–250.
4. LeBlanc J. Plasma catecholamines and cardiovascular responses to cold and mental activity / J. LeBlanc, J. Cote, M. Jobin, et al. // J. Appl. Physiol. Respir. Environ. Exerc. Physiol. – 1979. – Vol. 47, Is. 6. – P. 1207–1211.
5. Radomski M.W. Hormone response of normal and intermittent cold-preadapted humans to continuous cold / Radomski M.W., Boutelier C. // J. Appl. Physiol. Respir. Environ. Exerc. Physiol. – 1982. – Vol. 53, Is. 3. – P. 610–616.
6. Brenner I.K. Immune changes in humans during cold exposure: effects of prior heating and exercise/ I.K. Brenner, J.W. Castellani, C. Gabaree, et al. // J. Appl. Physiol. – 1999. – Vol. 87. – P. 699–710.
7. Lans A.A. Cold acclimation affects immune composition in skeletal muscle of healthy lean subjects / A.A. Lans, M.R. Boon, M.C. Haks, et al. // Physiol. Reports. – 2015. – Vol. 3, Is. 7. – e12394.
8. Калёнова Л.Ф. Влияние кратковременных локальных тепловых и холодовых аппликаций на область грудной клетки на иммунофизиологические параметры организма в эксперименте / Л.Ф. Калёнова, М.А. Новикова // Бюллетень экспериментальной биологии и медицины. – 2012. – Т. 154, № 12. – С. 737-740.
9. Беседин И.М. Моделирующий эффект температурных воздействий слабой интенсивности на психонервноиммуноэндокринную систему теплокровного организма / И.М. Беседин, А.С. Бажин, В.П. Мельников // Вестник Тюменского государственного университета. – 2016. – Т. 2, № 2. – С. 144-159. doi: 10.21684/2411-7927-2016-2-2-144-159
10. Добродеева Л.К. Иммунологическое районирование. – Сыктывкар: КНЦ, 2001. – С. 56.
11. Правада Н.С. Клинико-иммунологическая характеристика пациентов с распространенными формами туберкулёза лёгких / Н.С. Правада, А.М. Будрицкий // Вестник Витебского гос. мед. Университета. – 2015. – Т. 14, № 1.– С. 83–90.
12. Постаногова Н.О. Показатели крови у детей с инфекционным мононуклеозом в зависимости от этиологии заболевания в остром периоде и катамнезе / Н.О. Постаногова, Л.В. Софронова // Вопросы практической педиатрии – 2016. – Т. 11, № 3. – С. 22–25.
13. Zhang Y. CCR2+ Inflammatory monocytes are recruited to yersinia pseudotuberculosis pyogranulomas and dictate adaptive responses at the expense of innate immunity during oral infection / Y. Zhang, C. Khairallah, B.S. Sheridan, et al. // Infection and Immunity. – 2018. – Vol. 86, Is. 10. – e00509-18. doi: 10.1128/IAI.00509-18.
14. Коростелев А.Н. Некоторые первичные доброкачественные и злокачественные опухоли сердца (диагностика, клиника, хирургическое лечение) / А.Н. Коростелев, А.Ю. Кипренский, Ю.В. Кипренский и др. // Хирургия. – 2015. – № 1. – С. 22–29.
15. Фрейдлин И.С. Иммунная система и её дефекты. – СПб., 1998. – 110 с.
16. Земсков А.М. Принципы дифференцированной иммунотерапии гнойно-воспалительных заболеваний различного генеза / А.М. Земсков, В.А. Земскова, М.А. Земсков и др. // Вестник новых медицинских технологий. – 2015. – Т. 22, № 2. – С. 82–85.
17. Вассерман Е.Н. SP-D контролирует баланс Th1и Th2 цитокинов и обладает признаками эндогенного репрограмирования макрофагов / Е.Н. Вассерман, С.В. Лямина, Ш.Л. Шемшелашвили и др. // Фунд. Исслед. – 2010. – № 6. – С. 28–36.
18. Старикова Э.А. Особенности адгезии к эндотелиальным клеткам субпопуляций моноцитов CD14+CD16+ и CD14+CD16- человека / Э.А. Старикова, А.М. Лебедева, И.С. Фрейдлин // Цитология. – 2010. – № 5. – С. 380–383.
19. Барышников А.Ю. Иммунологические проблемы апоптоза / А.Ю. Барышников, Ю.В. Шишкин. – М.: Эдиториал УРСС, 2002. – 320 с.
20. Лушников Е.Ф. Гибель клетки (апоптоз) / Е.Ф. Лушников, А.Ю. Абросимов – М.: Медицина, 2001. – 192 с.
21. Jacobson M.D. Apoptosis the molecular biology of programmed cell death / M.D. Jacobson, N. McCarthy. – Oxford University Press, 2002. – 321 p.
22. Wannemuhler M.J. Detection of tumor necrosis factor a from porcine alveolar macrophages using an L929 fibroblast bioassay / M.J. Wannemuhler, T.W. Molitor // J. Immunol. Meth. – 1991. – Vol. 140. – P. 15–22.
23. Casares N. Caspase-dependent immunogenicity of doxorubic-induced cell death / N. Casares, M.O. Pequignot, A. Tesniere // J. Exp. Med. – 2005. – Vol. 202, Is. 12. – 1691–1701.
24. DeMarco R. Tumor-stimulated release of tumor necrosis factor-alpha by human monocyte-derived macrophages / R. DeMarco, J.E. Ensor, J.D. Hasday // Cell Immunol. – 1992. – Vol. 214. – P. 157–481.
25. Малайцев В.В. Индуцируемая опухолевыми клетками активация системы врожденного иммунитета в популяции клеток селезенки интактных мышей in vitro / В.В. Малайцев, И.М. Богданова // Иммунология. – 2014. – № 5. – С. 247–250.
26. Curtsinger J.M. Autocrine IFN-γ promotes naïve CD8 T cell differentiation and synergizes with IFNα to stimulate strong function / J.M. Curtsinger, P. Agarwal, D.C. Lins, et al. // J. Immunol. – 2012. – Vol. 189, Is. 2. – P. 659–668.

Автор
Ставинская Ольга Александровна
Институт физиологии природных адаптаций Федерального государственного бюджетного учреждения науки Федерального исследовательского центра комплексного изучения Арктики им. акад. Н.П. Лавёрова РАН
Кандидат биологических наук, старший научный сотрудник
Российская Федерация, 163000, г. Архангельск, пр. Ломоносова, 249
ifpa-olga@mail.ru

Это произведение доступно по лицензии Creative Commons «Attribution-NonCommercial» («Атрибуция — Некоммерческое использование») 4.0 Всемирная.