Рекомендуемые стандарты параметров контроля качества лаборатории вспомогательных репродуктивных технологий

УДК 576.372:57.04

Лагунов А. М., Суэйн Д. Е., Портнов И. Г., Кичук П. И., Балезин С. Л.

Колорадский Центр Репродуктивной Медицины, г. Торонто, Канада;
Научная Лаборатория Фертильности, г. Лон Три, США;
ЗАО Центр Семейной Медицины, г. Екатеринбург, Российская Федерация

Резюме.
В обзоре представлен анализ стандартов и протоколов контроля качества в лаборатории вспомогательных репродуктивных технологий. Особое внимание уделено конструкции и дизайну лаборатории, поддержанию стандартов качества и профессиональной безопасности в повседневной работе персонала. Представлены данные литературы о необходимости своевременных измерений показателей внешней среды лаборатории, технологического оборудования и настороженности в отношении источников таких контаминантов, как летучие органические соединения и пылевые частицы. Систематизированы сведения литературы о критических значениях температурных вариаций и термодинамической активности ионов водорода в средах для культивирования гамет и эмбрионов человека. Подчеркивается тесная взаимосвязь между проведением контроля качества в лаборатории и эффективностью программ вспомогательных репродуктивных технологий.
Ключевые слова:
вспомогательные репродуктивные технологии, контроль качества, инкубатор, среда для культивирования эмбрионов, пылевые частицы, летучие органические соединения

ЛИТЕРАТУРА
1. Matorras, R. Influence of the time interval between embryo catheter loading and discharging on the success of IVF./ Mendoza R., Exposito A., Rodriguez-Escudero F. J.//Hum Reprod — 2004-Volume 19. № 9. pp. 2027–2030.
2. Sparks, L.E. Volatile organic compound emissions from latex paint — Part 1. Chamber experiments and source model development. / Guo Z., Chang J. C., Tichenor B. A.// Indoor Air -1999- Volume 9 № 1: pp. 10–70.
3. Ottosen L.D. Light exposure of the ovum and preimplantation embryo during ART procedures. /Hindkjaer G., Ingerslev J. // JAssist Reprod Genet- 2007- Volume 24 №2. pp. 99–103.
4. Takenaka M. Effects of light on development of mammalian zygotes. /Horiuchi T., Yanagimachi R. // Proc Natl Acad Sci, U S A- 2007 — Volume 104. № 36. P. 14289-14293.
5. Hall J. The origin, effects and control of air pollution in laboratories used for human embryo culture. /Gilligan A., Schimmel T., Cecchi M., Cohen J. // Hum Reprod-1998- Volume 13 Suppl 4: pp. 146–155.
6. Cohen J. Ambient air and its potential effects on conception in vitro. /Gilligan A., Esposito A., Schimmel W., Dale T. B. //Hum Reprod — 1997 — Volume 12. № 8. pp. 1742–1749.
7. Zhang J.Q. Reduction in exposure of human embryos outside the incubator enhances embryo quality and blastulation rate. /Li X. L., Peng L., Guo Y, .Heng B., Tong G. Q. // Reprod Biomed Online — 2010- Volume 20. № 4 pp. 510–550.
8. Thomas T. Culture systems: air quality. // Methods Mol Biol — 2012. Volume 912. P. 313-24.
9. Sharmin R. Application of ultraviolet light-emitting diode photocatalysis to remove volatile organic compounds from indoor air. /Ray M.B. // J Air Waste Manag Assoc — 2012- Volume 62. № 9. pp. 1032–1039.
10. Cohen J. Culture and quality control of embryos. / Gilligan A., Willadsen S. // Hum Reprod- 1998 — Volume 13 Suppl 3. P. 137-144; discussion 145–147.
11. Khoudja R.Y. Better IVF outcomes following improvements in laboratory air quality. /Xu Y., Li T., Zhou C. J.// Assist Reprod Genet — 2013- Volume 30. № 1. pp. 69–76.
12. Guris J. Air Quality Management in Practical Manual of InVitro Ferilization. / V.A. Nagy Z., Argarwal A., Editor. 2012, Springer: New York. pp. 17–27.
13. Higdon H.L. Incubator management in an assisted reproductive technology laboratory. / Blackhurst D.W., Boone W.R. //Fertil Steril — 2008- Volume 89. № 3. pp. 703–710.
14. Leese H.J. Metabolism of the viable mammalian embryo: quietness revisited. / Baumann C. G., Brison D. R., McEvoy T. G., Sturmey R. G.// Mol Hum Reprod- 2008- Volume 14. № 12. pp. 667–672.
15. Sun X.F. Overheating is detrimental to meiotic spindles within in vitro matured human oocytes. / Wang W.H., Keefe D.L. // Zygote. Volume -2004. 12. №1. pp. 65–70.
16. Wang W.H. Limited recovery of meiotic spindles in living human oocytes after cooling-rewarming observed using polarized light microscopy. / Meng L., Hackett R. J., Odenbourg R., Keefe D. L. // Hum Reprod -2001- Volume 16. № 11. pp. 2374–2378.
17. Wang W.H. Rigorous thermal control during intracytoplasmic sperm injection stabilizes the meiotic spindle and improves fertilization and pregnancy rates./ Meng L., Hackett R.,J., Oldenbourg R., Keefe D. L// Fertil Steril- 2002- Volume 77. № 6. pp. 1274–1277.
18. David A.Temperature changes in different parts of the rabbit oviduct. Preliminary report. /A. Vilensky, and H. Nathan// Harefuah-1971. Volume 80. №4. pp. 180–200.
19. Hunter, R.H., Temperature gradients in female reproductive tissues.// Reprod Biomed Online-2012- Volume 24 №4. pp. 377–380.
20. Hunter R.H. Pre-ovulatory graafian follicles are cooler than neighbouring stroma in pig ovaries. /Bogh. I. B., Einer-Jensen N., Muller S., Greve T. // Hum Reprod — 2000- Volume 15 №2. pp. 273–283.
21. Hong K.H. Optimizing the temperature for embryo culture in IVF: a randomized controlled trial (RCT) comparing standard culture temperature of 37C to the reduced more physiologic temperature of 36C. / Forman H., Lee K.M., Ferry N., Treff R. Fertility and Sterility- 2012- Volume 98 3 Supplement. P. S167.
22. Cooke, S. Objective assessments of temperature maintenance using in vitro culture techniques. / Tyler J.P., Driscoll G. // J Assist Reprod Genet- 2002- Volume 19 №8. pp. 368–375.
23. Swain J.E. Optimizing the culture environment in the IVF laboratory: impact of pH and buffer capacity on gamete and embryo quality// Reprod Biomed Online-2010- Volume 21. №1. pp. 6–16.
24. Swain J.E., Is there an optimal pH for culture media used in clinical IVF? // Hum Reprod Update -2012 — Volume 18. №3. pp. 333–339.
25. Swain J.E. New pH-buffering system for media utilized during gamete and embryo manipulations for assisted reproduction. T.B. Pool // Reprod Biomed Online- 2009- Volume 18. №6. pp. 799–810.
26. Hamamah S. Internal pH of human spermatozoa: effect of ions, human follicular fluid and progesterone. /Magnoux E., Royere D., Barthelemy C., Dacheux J. L., Gatti J. L. // Mol Hum Reprod- 1996. Volume 2. №4. pp. 219–24.
27. Lane M. Cryopreservation reduces the ability of hamster 2-cell embryos to regulate intracellular pH. / Lyons E.A., Bavister B.D. // Hum Reprod- 2000- Volume 15. №2. pp. 389–394. 28. Phillips K.P. Intracellular pH regulation by HCO3-/Clexchange is activated during early mouse zygote development. / Baltz J.M. // Dev Biol- 1999- Volume 208. №2. pp. 392–405.
29. Boone W.R.Sources of variation in measurements of carbon dioxide levels inside incubators. /Johnson J. E., Lee S. T., Detry M. A., Blackhurst D. W. // J Assist Reprod Genet — 1996 Volume 13. №7. pp. 606–608.

Авторская справка
Лагунов Александр Михаилович
Колорадский Центр Репродуктивной Медицины, Директор ВРТ Лаборатории
Канада, г.Торонто, ул. Блорстритист, 160, M4W 189
Центр Семейной Медицины, Научный консультант
Российская Федерация, г. Екатеринбург, ул. Н.Васильева 1/3, 620043
e-mail: alexander.lagunov@gmail.com

Суэйн Джейсон
Научная Лаборатория Фертильности, Директор ВРТ Лаборатории.
США, г. Лон Три, ул. Риджгейт сир 10290, СО 80124

Портнов Игорь Григорьевич
Центр Семейной Медицины, Генеральный директор, к. м. н.
Российская Федерация, г. Екатеринбург, ул. Н. Васильева 1/3, 620043

Кичук Павел Иванович
Центр Семейной Медицины, Клинический эмбриолог
Российская Федерация, г. Екатеринбург, ул. Н. Васильева 1/3, 620043

Балезин Сергей Леонидович
Центр Семейной Медицины, Директор ВРТ Лаборатории, к. м. н.
Россия, г. Екатеринбург, ул. Н. Васильева 1/3, 620043